一种虎奶菇超支化多糖降解物及其制备方法

1.本发明属于生物材料技术领域，具体涉及一种虎奶菇超支化多糖降解物及其制备方法。


背景技术：

2.虎奶菇(pleurotus tuber-regium，ptr)，学名菌核侧耳，是热带、亚热带地区一种珍稀食药两用真菌，富含蛋白质、多糖等活性物质，具有较高的营养价值和药用价值。虎奶菇多糖是一种典型的天然超支化多糖，其分子内部存在很多空腔，外围则有着大量能进行功能化改性的端基官能团，不仅具有降血糖、降血脂、抗氧化、抗肿瘤、增强人体免疫能力等多种生物活性，在食品、材料及生物医学等方面均也具有巨大的应用潜力。天然提取的虎奶菇超支化多糖分子量约为106g/mol，分支度为0.45-0.70，由于分子量较大、结构过于紧凑、球形结构内部存在空间位阻，因而在实际应用中受到了一定限制。
3.因此，对虎奶菇多糖进行降解改性，使其低分子量和分支度降低至合适范围，有助于增加其溶解性、降低分子尺寸，进而提高功能性和生物活性，促进虎奶菇超支化多糖在食品、药品等领域研究和应用价值的进一步开发。传统的多糖降解多采用化学法和/或物理法，虽然普适性强但存在一定缺陷，如：反应条件极端、能耗高、过程规律性差难以控制、产生有害物质污染环境等。此外，由于超支化多糖表观上呈紧凑的准球状，超声降解等方法对其作用效果也不佳，难以破坏分子内部的糖苷键，缺少能够有效对虎奶菇超支化多糖降解的方法。


技术实现要素：

4.本发明旨在解决上述技术问题，提供一种虎奶菇超支化多糖降解物的制备方法，包括以下步骤：
5.(1)向虎奶菇超支化多糖溶液中加入活化后的酶溶液，反应，得到混合溶液；所述酶溶液为纤维素酶溶液或β-葡萄糖苷酶溶液；
6.(2)将所述混合溶液中的酶灭活，得到酶解液；对所述酶解液除杂，得到所述虎奶菇超支化多糖降解物。
7.优选地，所述虎奶菇超支化多糖溶液的浓度为5-25mg/ml。
8.优选地，所述纤维素酶溶液的浓度为2-100u/ml；所述β-葡萄糖苷酶溶液浓度为0.2-30u/ml。
9.优选地，所述步骤(1)中，活化的时间为10-20min；活化的温度为：纤维素酶30-60℃，β-葡萄糖苷酶40-55℃。
10.优选地，所述酶溶液和虎奶菇超支化多糖溶液的体积比为1-2：1-2。
11.优选地，所述步骤(1)中，反应的时间为1-3h，反应的ph为4-6.8；反应的温度为：纤维素酶30-60℃，β-葡萄糖苷酶40-55℃。
12.优选地，所述酶溶液和虎奶菇超支化多糖溶液的体积比为1-2：1-2。
13.优选地，所述步骤(2)中，灭活的方法为，80-100℃加热5-15min。
14.优选地，所述步骤(2)中，除杂时透析的截留量为3000-4000da。
15.本发明还提供一种虎奶菇超支化多糖降解物。
16.本发明还提供纤维素酶溶液或β-葡萄糖苷酶溶液在制备虎奶菇超支化多糖降解物的应用。
17.本发明的技术方案相比现有技术具有以下优点：
18.(1)酶解后，得到的虎奶菇超支化多糖降解产物分子量可显著降低。针对虎奶菇超支化多糖的结构特点，本发明采用对多糖中大量存在的β-1,3、β-1,4和β-1,6糖苷键具有降解作用的酶，通过控制酶解条件，生成较低分子量的虎奶菇超支化多糖降解产物和还原糖。
19.(2)酶法降解具有特异性强、反应条件温和、过程可控和绿色高效等优点，且降解时不破坏虎奶菇超支化多糖的主要基团结构。经过降解后的虎奶菇超支化多糖与玉米醇溶蛋白形成的纳米颗粒载体具有更好的稳定性，可开发作为新型包裹材料对疏水性生物活性分子进行包埋应用。
附图说明
20.图1为不同纤维素酶浓度处理时多糖的还原糖含量、残留蛋白含量和分子量图。
21.图2为纤维素酶处理不同反应温度时多糖的还原糖含量、残留蛋白含量和分子量图。
22.图3为纤维素酶处理不同反应ph时多糖的还原糖含量、残留蛋白含量和分子量图。
23.图4为不同β-葡萄糖苷酶浓度处理时多糖的还原糖含量、残留蛋白含量和分子量图。
24.图5为β-葡萄糖苷酶处理不同反应温度时多糖的还原糖含量、残留蛋白含量和分子量图。
25.图6为β-葡萄糖苷酶处理不同反应ph时多糖的还原糖含量、残留蛋白含量和分子量图。
26.图7为酶降解前后多糖红外光谱图：(a)纤维素酶降解；(b)β-葡萄糖苷酶降解。
27.图8为酶降解前后多糖二级结构图：(a)为降解前的多糖；(b)为纤维素酶降解后；(c)为β-葡萄糖苷酶降解后。
28.图9为降解前后多糖tem形貌结构图：(a)为降解前的多糖；(b)为纤维素酶降解后；(c)为β-葡萄糖苷酶降解后。
29.图10为不同ph下玉米醇溶蛋白与不同分子量多糖合成纳米颗粒数据图：(a)纳米颗粒粒径；(b)纳米颗粒zeta电位。
具体实施方式
30.下面结合附图和具体实施例对本发明作进一步说明，以使本领域的技术人员可以更好地理解本发明并能予以实施，但所举实施例不作为对本发明的限定。
31.实施例1
32.称取20mg虎奶菇超支化多糖，溶解于1.0mlph为4.8柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液，超声至溶解。配制浓度为40u/ml的纤维素酶水溶液，在40℃条件下活化10min。将多糖溶液和
酶溶液等体积混合，振荡均匀，置于40℃水浴锅中，ph为4.8，恒温反应2h。反应完成后，90℃水浴加热10min使酶灭活。将酶解液冷却至20℃后，装入截流量为3500da的透析袋，以去离子水进行透析，间隔0.5h换水一次，透析48h后将透析袋中截留的液体进行冷冻干燥，即得酶解后的虎奶菇超支化多糖降解产物。
33.实施例2
34.称取20mg虎奶菇超支化多糖，溶解于1.0mlph为4.8柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液，超声至溶解。配制浓度为2、10、20和100u/ml的纤维素酶水溶液，在40℃条件下活化10min。将多糖溶液和酶溶液等体积混合，振荡均匀，置于40℃水浴锅中，ph为4.8，恒温反应2h。反应完成后，90℃水浴加热10min使酶灭活。将酶解液冷却至20℃后，装入截流量为3500da的透析袋，以去离子水进行透析，间隔0.5h换水一次，透析48h后将透析袋中截留的液体进行冷冻干燥，即得酶解后的虎奶菇超支化多糖降解产物。
35.实施例3
36.称取20mg虎奶菇超支化多糖，溶解于1.0mlph为4.8柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液，超声至溶解。配制浓度为40u/ml的纤维素酶水溶液，在40℃条件下活化10min。将多糖溶液和酶溶液等体积混合，振荡均匀，分别置于30、35、50和60℃水浴锅中，ph为4.8，恒温反应2h。反应完成后，90℃水浴加热10min使酶灭活。将酶解液冷却至20℃后，装入截流量为3500da的透析袋，以去离子水进行透析，间隔0.5h换水一次，透析48h后将透析袋中截留的液体进行冷冻干燥，即得酶解后的虎奶菇超支化多糖降解产物。
37.实施例4
38.称取20mg虎奶菇超支化多糖，溶解于1.0mlph为4.8柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液，超声至溶解。配制浓度为40u/ml的纤维素酶水溶液，在40℃条件下活化10min。将多糖溶液和酶溶液等体积混合，振荡均匀，置于40℃水浴锅中，分别控制ph为4、4.4、5.2、5.6、6、6.4和6.8，恒温反应2h。反应完成后，90℃水浴加热10min使酶灭活。将酶解液冷却至20℃后，装入截流量为3500da的透析袋，以去离子水进行透析，间隔0.5h换水一次，透析48h后将透析袋中截留的液体进行冷冻干燥，即得酶解后的虎奶菇超支化多糖降解产物。
39.实施例5
40.称取20mg虎奶菇超支化多糖，溶解于1.0mlph为4柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液，超声至溶解。配制浓度为40u/ml的纤维素酶水溶液，在30℃条件下活化20min。将多糖溶液和酶溶液等体积混合，振荡均匀，置于40℃水浴锅中，控制ph为4.8，恒温反应3h。反应完成后，95℃水浴加热8min使酶灭活。将酶解液冷却至10℃后，装入截流量为3000da的透析袋，以去离子水进行透析，间隔0.5h换水一次，透析60h后将透析袋中截留的液体进行冷冻干燥，即得酶解后的虎奶菇超支化多糖降解产物。
41.实施例6
42.称取20mg虎奶菇超支化多糖，溶解于1.0mlph为4柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液，超声至溶解。配制浓度为40u/ml的纤维素酶水溶液，在60℃条件下活化10min。将多糖溶液和酶溶液等体积混合，振荡均匀，置于40℃水浴锅中，控制ph为4.8，恒温反应3h。反应完成后，99℃水浴加热5min使酶灭活。将酶解液冷却至30℃后，装入截流量为4000da的透析袋，以去离子水进行透析，间隔0.5h换水一次，透析36h后将透析袋中截留的液体进行冷冻干燥，即得酶解后的虎奶菇超支化多糖降解产物。
43.实施例7
44.称取20mg虎奶菇超支化多糖，溶解于1.0mlph为4.8柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液，超声至溶解。分别配制浓度为0.2，1，2，5，10，20和30u/ml的β-葡萄糖苷酶水溶液，在40℃条件下活化10min。将多糖溶液和酶溶液等体积混合，振荡均匀，置于40℃水浴锅中，ph为4.8，恒温反应2h。反应完成后，90℃水浴加热10min使酶灭活。将酶解液冷却至20℃后，装入截流量为3500da的透析袋，以去离子水进行透析，间隔0.5h换水一次，透析48h后将透析袋中截留的液体进行冷冻干燥，即得酶解后的虎奶菇超支化多糖降解产物。
45.实施例8
46.称取20mg虎奶菇超支化多糖，溶解于1.0mlph为4.8柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液，超声至溶解。配制浓度为30u/ml的β-葡萄糖苷酶水溶液，在40条件下活化10min。将多糖溶液和酶溶液等体积混合，振荡均匀，置于40℃水浴锅中，ph分别为4.4，4.8，5.2，5.6，6.0，6.4和6.8，恒温反应2h。反应完成后，90℃水浴加热10min使酶灭活。将酶解液冷却至20℃后，装入截流量为3500da的透析袋，以去离子水进行透析，间隔0.5h换水一次，透析48h后将透析袋中截留的液体进行冷冻干燥，即得酶解后的虎奶菇超支化多糖降解产物。
47.实施例9
48.称取20mg虎奶菇超支化多糖，溶解于1.0mlph为4.8柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液，超声至溶解。配制浓度为40u/ml的β-葡萄糖苷酶水溶液，在40℃条件下活化10min。将多糖溶液和酶溶液等体积混合，振荡均匀，分别置于40，45，50和55℃水浴锅中，ph为4.8，恒温反应2h。反应完成后，90℃水浴加热10min使酶灭活。将酶解液冷却至20℃后，装入截流量为3500da的透析袋，以去离子水进行透析，间隔0.5h换水一次，透析48h后将透析袋中截留的液体进行冷冻干燥，即得酶解后的虎奶菇超支化多糖降解产物。
49.对比例1
50.称取20mg虎奶菇超支化多糖，溶解于1.0mlph为4.8柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液，超声至溶解。配制浓度为1000u/ml的纤维素酶水溶液，在40℃条件下活化10min。将多糖溶液和酶溶液等体积混合，振荡均匀，置于40℃水浴锅中，ph为4.8，恒温反应2h。反应完成后，90℃水浴加热10min使酶灭活。将酶解液冷却至20℃后，装入截流量为3500da的透析袋，以去离子水进行透析，间隔0.5h换水一次，透析48h后将透析袋中截留的液体进行冷冻干燥，即得酶解后的虎奶菇超支化多糖降解产物。
51.对比例2
52.称取20mg虎奶菇超支化多糖，溶解于1.0mlph为4.8柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液，超声至溶解。配制浓度为40u/ml的蜗牛酶水溶液，在40℃条件下活化10min。将多糖溶液和酶溶液等体积混合，振荡均匀，置于40℃水浴锅中，ph为4.8，恒温反应2h。反应完成后，90℃水浴加热10min使酶灭活。将酶解液冷却至20℃后，装入截流量为3500da的透析袋，以去离子水进行透析，间隔0.5h换水一次，透析48h后将透析袋中截留的液体进行冷冻干燥，即得酶解后的虎奶菇超支化多糖降解产物。
53.对比例3
54.称取20mg虎奶菇超支化多糖，溶解于1.0mlph为4.8柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液，超声至溶解。配制浓度为40u/ml的溶菌酶水溶液，在40℃条件下活化10min。将多糖溶液和酶溶液等体积混合，振荡均匀，置于40℃水浴锅中，ph为4.8，恒温反应2h。反应完成后，90℃水
浴加热10min使酶灭活。将酶解液冷却至20℃后，装入截流量为3500da的透析袋，以去离子水进行透析，间隔0.5h换水一次，透析48h后将透析袋中截留的液体进行冷冻干燥，即得酶解后的虎奶菇超支化多糖降解产物。
55.效果评价1
56.实施例和对比例的还原糖含量、蛋白含量和分子量分别由dns法、牛血清蛋白试剂盒和sec-malls-rid法测定；多糖的粒径和电位使用马尔文粒径仪进行测定；多糖糖苷键测定使用离子色谱测定；多糖二级结构的测定使用圆二色谱仪；多糖的形貌特征通过透射电镜测定。
57.实施例1的结果如图3所示，降解后酶解液中所得还原糖含量为1.7mg/ml，残留蛋白含量为0.12mg/ml，降解后多糖的重均分子量(mw)为2.74
×
105g/mol。
58.实施例2的结果如图1所示，降解后酶解液中所得还原糖含量分别为0.45、0.60、0.75、2.00mg/ml，残留蛋白含量分别为0.03、0.04、0.07、0.20mg/ml，降解后多糖的重均分子量(mw)分别为3.03
×
106、2.92
×
106、2.63
×
106、1.91
×
106g/mol。
59.实施例3的结果如图2所示，降解后酶解液中所得还原糖含量分别为1.36、1.38、1.40、1.39mg/ml，残留蛋白含量分别为0.14、0.11、0.12、0.14mg/ml，降解后多糖的重均分子量(mw)分别为2.20
×
106、1.72
×
106、1.75
×
106、1.80
×
106g/mol。
60.实施例4的结果如图3所示，降解后酶解液中所得还原糖含量分别为1.44、1.51、1.40、1.41、1.38、1.36、1.35mg/ml，残留蛋白含量分别为0.11、0.11、0.13、0.11、0.12、0.15、0.15mg/ml，降解后多糖的重均分子量(mw)分别为5.19
×
105、4.44
×
105、3.22
×
105、4.43
×
105、4.81
×
105、5.87
×
105、1.70
×
106g/mol。
61.实施例7的结果如图4所示，β-葡萄糖苷酶经过酶浓度优化，降解后酶解液中所得还原糖含量分别为1.24、1.27、1.36、1.71、2.91、8.10、11.49mg/ml，残留蛋白含量分别为0.07、0.18、0.19、0.46、1.04、2.00、3.03mg/ml，降解后多糖的重均分子量(mw)分别为1.41
×
106、1.28
×
106、1.21
×
106、7.36
×
105、6.61
×
105、4.55
×
105、4.77
×
105g/mol。
62.实施例8的结果如图5所示，β-葡萄糖苷酶经过ph优化，降解后酶解液中所得还原糖含量分别为2.94、3.14、3.29、2.63、2.57、2.37、2.31mg/ml，残留蛋白含量分别为0.38、0.37、0.38、0.36、0.36、0.36、0.42mg/ml，降解后多糖的重均分子量(mw)分别为6.04
×
105、5.39
×
105、5.16
×
105、5.75
×
105、6.84
×
105、7.81
×
105、1.28
×
106g/mol。
63.实施例9的结果如图6所示，β-葡萄糖苷酶经过温度优化，降解后酶解液中所得还原糖含量分别为2.58、2.96、3.57、2.97mg/ml，残留蛋白含量分别为0.39、0.37、0.40、0.43mg/ml，降解后多糖的重均分子量(mw)分别为5
×
105、4.7
×
105、3.98
×
105、4.7
×
105g/mol。
64.结果如图7(a)所示，与原糖相比，降解后多糖的红外光谱没有新峰出现和旧峰消失，表明降解后多糖的单糖组成、糖苷键,糖配置和取代基的糖链没有显著变化。圆二色性可以用来测定大分子的螺旋、折叠和随机线的信息。结果如图8(b)所示，降解前后多糖的圆二光谱无明显差异，说明不同样品在水溶液中的二级结构是相似的。当ca2+加入样品后，降解前后多糖在190-200nm处的圆二色谱均发生了较大的变化，这可能是由于多糖溶液与ca2+之间发生了络合反应，导致配体生物分子中键的极化和分子构象的改变。刚果红染料添加到样品时,样品的光谱在190-200nm显示明显的振动,表明刚果红和降解前后多糖复合后增
加了多糖的不对称，说明降解前后多糖可能存在三螺旋结构。图9(b)的电镜图验证了经过纤维素酶降解的多糖仍存在超支化结构，但分支间的交联纠缠减少。
65.对比例1的结果显示，降解后溶液中还原糖含量高达6.53mg/ml，多糖主要产物的重均分子量(mw)为1623g/mol，并且在透析过程中损失严重，表明超支化多糖几乎彻底降解，得率太低。对比例2采用蜗牛酶，结果显示，降解后多糖主要产物的重均分子量(mw)为2.68
×
106g/mol，酶解效率明显低于纤维素酶，并且蜗牛酶成本更高。对比例3采用溶菌酶，降解后多糖主要产物的重均分子量(mw)为3.12
×
106g/mol，几乎没有酶解效果。
66.同时，采用β-葡萄糖苷酶，多糖主要产物的重均分子量(mw)最低可降至3.98
×
105g/mol，但残留蛋白含量为0.4mg/ml。结果如图7(b)所示，与原糖相比，降解后多糖的红外光谱没有新峰出现和旧峰消失，表明降解后多糖的单糖组成、糖苷键，糖配置和取代基的糖链没有显著变化。但降解后的多糖与刚果红染料的圆二色谱没有出现明显的振动峰，说明降解后多糖结构发生了较为明显的变化，其三螺旋结构消失(图8(b))。图9(c)验证了经过β-葡萄糖苷酶降解的多糖分支明显减少变短，分子链条间的交联减少，多糖结构的变化会影响多糖的进一步应用。
67.效果评价2
68.选取由实施例1降解得到的多糖分子量由大到小分别命名为pc1，pc2和pc3，由降解得到的多糖分子量由大到小分别命名为pg1，pg2和pg3，以1：1的质量比与玉米醇溶蛋白合成纳米颗粒。为了研究ph对纳米粒子稳定性的影响，在制备纳米粒子过程中，使用1mol/l的hcl或naoh溶液调节ph(4.0、5.0、6.0、7.0、8.0和9.0)，并测定了相应纳米颗粒的粒径和电位，结果如图10所示。
69.原糖在ph 4，5和9时相对粒径较小，酸碱条件较强，粒径范围在250nm-350nm之间，但在ph 6～8时粒径增加到450nm。结果表明，在不同ph条件下，原糖与玉米醇溶蛋白合成的纳米颗粒稳定性较差。此外，玉米醇溶蛋白与β-葡萄糖苷酶降解的多糖合成的纳米颗粒在粒径上也存在较大的变化。但在相同ph条件下，其粒径均小于原糖。样品pg1、pg2和pg3合成的纳米颗粒的变化值分别为162.5nm、282.8nm和248.9nm。样品pg1中合成的纳米粒子的ph稳定性相对较好。而由玉米醇溶蛋白与纤维素酶降解的多糖合成的三组纳米颗粒则更加稳定，其变化范围分别为89.6nm、104.9nm和57.9nm。其中，pc3与玉米醇溶蛋白合成的纳米粒子稳定性最好，粒径在150～250nm之间。7组合成的纳米颗粒在酸性和碱性环境下电位绝对值较高，而在近中性环境下电位绝对值降低，这可能是由于酸碱的变化增加了多糖的负电荷。在ph 4.0-9.0范围内，pc3与玉米醇溶蛋白合成的纳米粒子电位范围为-24.4mv～-32.6mv，具有最好的电位稳定性。由此证明经过纤维素酶降解的多糖与玉米醇溶蛋白合成的纳米颗粒的稳定性明显强于原糖和β-葡萄糖苷酶降解后的多糖。
70.综上可以看出，使用纤维素酶对虎奶菇超支化多糖具有良好的降解效果，控制其酶解的温度、浓度和ph值，可以稳定地获得理想的虎奶菇超支化多糖分子量。β-葡萄糖苷酶也可有效降低虎奶菇超支化多糖的分子量，同时对结构特征产生部分影响。纤维素酶法降解具有特异性强、反应条件温和、过程可控和绿色高效等优点，降解时不破坏虎奶菇超支化多糖的基团结构，并且用该方法获取的虎奶菇超支化多糖与玉米醇溶蛋白形成的纳米颗粒载体有更好的应用稳定性。
71.显然，上述实施例仅仅是为清楚地说明所作的举例，并非对实施方式的限定。对于
所属领域的普通技术人员来说，在上述说明的基础上还可以做出其它不同形式变化或变动。这里无需也无法对所有的实施方式予以穷举。而由此所引申出的显而易见的变化或变动仍处于本发明创造的保护范围之中。

技术特征：
1.一种虎奶菇超支化多糖降解物的制备方法，其特征在于，包括以下步骤：(1)向虎奶菇超支化多糖溶液中加入活化后的酶溶液，反应，得到混合溶液；所述酶溶液为纤维素酶溶液或β-葡萄糖苷酶溶液；(2)将所述混合溶液中的酶灭活，得到酶解液；对所述酶解液除杂，得到所述虎奶菇超支化多糖降解物。2.根据权利要求1所述的制备方法，其特征在于，所述虎奶菇超支化多糖溶液的浓度为5-25mg/ml。3.根据权利要求1所述的制备方法，其特征在于，所述纤维素酶溶液的浓度为2-100u/ml；所述β-葡萄糖苷酶溶液的浓度为0.2-30u/ml。4.根据权利要求1所述的制备方法，其特征在于，所述步骤(1)中，活化的时间为10-20min；活化的温度为：纤维素酶30-60℃，β-葡萄糖苷酶40-55℃。5.根据权利要求1-3中任一项所述的制备方法，其特征在于，所述酶溶液和虎奶菇超支化多糖溶液的体积比为1-2：1-2。6.根据权利要求1所述的制备方法，其特征在于，所述步骤(1)中，反应的时间为1-3h，反应的ph为4-6.8；反应的温度为：纤维素酶30-60℃，β-葡萄糖苷酶40-55℃。7.根据权利要求1所述的制备方法，其特征在于，所述步骤(2)中，灭活的方法为，80-100℃加热5-15min。8.根据权利要求1所述的制备方法，其特征在于，所述步骤(2)中，除杂时透析的截留量为3000-4000da。9.一种如权利要求1-8任一项所述的制备方法制备得到的虎奶菇超支化多糖降解物。10.纤维素酶溶液或β-葡萄糖苷酶溶液在制备虎奶菇超支化多糖降解物的应用。

技术总结
本发明属于生物材料技术领域，具体涉及一种虎奶菇超支化多糖降解物及其制备方法。本发明是针对超支化多糖的糖苷键构成，采用纤维素酶或β-葡萄糖苷酶处理的方法，有效切断其中的糖苷键，获得了多糖降解产物，酶解后，得到的多糖降解产物分子量显著降低。酶法降解具有特异性强、反应条件温和、过程可控、绿色高效等优点，且降解时不破坏底物的基团结构，是实现超支化多糖有效降解的重要工具。针对虎奶菇超支化多糖的结构特点，本发明采用对其中大量存在的糖苷键具有降解作用的纤维素酶或β-葡萄糖苷酶，通过控制酶解条件，生成低分子量的多糖降解产物和还原糖，为超支化多糖的结构改性和高附加值产品的开发奠定基础。高附加值产品的开发奠定基础。高附加值产品的开发奠定基础。


技术研发人员：陈磊 唐璐莹 孙延辉 葛佩佩 丁重阳 陈献忠
受保护的技术使用者：江南大学
技术研发日：2021.11.29
技术公布日：2022/3/8